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TECHNICAL ARTICLESBradford蛋白浓度测定试剂盒使用方法:
1、 取1ml蛋白标准配置液加入到25mgBSA的蛋白标准管中,*溶解蛋白标准品,即为25mg/ml的蛋白标准溶液。配制成的蛋白标准溶液 可-20℃长期保存。
2、 取适量25mg/ml蛋白标准溶液,稀释至终浓度为0.5mg/ml。标准品与蛋白样品用同样的溶液稀释。但为了简便起见,通常使用 0.9%NaCl或PBS稀释标准品。
3、 做标准曲线。将标准品按0,1,2,4,8,12,16,20ul加到96孔板中,不足20ul的加标准品稀释液补足到20ul。
4、 将待测的蛋白样品稀释至合适浓度,加到96孔板中,使待测样品总体积也为20ul。
5、 每孔加入考马斯亮蓝G250溶液200ul,充分混匀(可将酶标板放在振荡器上振荡30s),室温放置3-5min后,以标准曲线0号做参比,在 595nm波长下比色测定,记录各孔吸光度值。以标准品蛋白含量(ug)为横坐标,吸光值为纵坐标,绘出标准曲线。
6、 如用分光光度计测定,请在第三步的时候将标准品体积改为1ml,浓度梯度用生理盐水稀释为0,1,2,5,10,15,30ug/ml。或根据样 品调整浓度梯度。
7、 将样品稀释至合适浓度,加到小试管中,使待测样品总体积也为1ml。
8、 每只试管加考马斯亮蓝G250溶液3ml,充分混匀,室温放置3-5min后,以标准曲线0号做参比,在 595nm波长下比色测定,记录各孔吸光度值。
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