酶联免疫检测试剂盒DRGT适用于检测体外培养的细胞分泌性成份。用无菌管收集细胞上清液，以1000×g离心15分钟，收集上清。

酶联免疫检测试剂盒原理：

酶联免疫检测试剂盒DRGT采用双抗体夹心法测定人雄激素结合蛋白（ABP）水平。用纯化的人雄激素结合蛋白（ABP）抗体包被微孔板，制成固相载体，实验时依次在微孔板中加入样本及标准品，并加入HRP标记的ABP抗体，形成抗体-抗原-酶标抗体复合物，反复洗涤后加底物TMB显色。TMB在过氧化物酶的催化下转化为蓝色，再用硫酸终止反应，转变成黄色。颜色的深浅和样品中的ABP含量呈正相关。采用酶标仪在450nm波长测定吸光度（OD值），根据标准曲线，计算测试样品中ABP浓度。 

实验材料与试剂配制：

1. 仪器与材料：酶标仪（使用前预热30分钟），微量加液器、吸头、蒸馏水或去离子水，滤纸。

2. 缓冲液使用：加5ul的缓冲液于50ul的样品中，如果样品量不够或者不确定，缓冲液和样品的混合比例不要小于1:10即可。混匀，静置1小时备用（如果标本是血清或者血浆，此步骤忽略）。

3. 洗液的配制：按1:100的比例配制洗液备用。

样品收集、处理及保存：

1. 细胞培养上清：适用于检测体外培养的细胞分泌性成份。用无菌管收集细胞上清液，以1000×g离心15分钟，收集上清。

2. 细胞：用PBS反复洗涤细胞3次，调整细胞浓度达到104-106/ml左右，通过反复冻融，使细胞破坏并放出细胞内成份，或者细胞超声粉碎，离心取上清液检测。

3. 血清：在室温下，血液自然凝固，以1000×g离心15分钟，取上清待测。

4. 血浆：应根据标本的要求选择EDTA或柠檬酸钠作为抗凝剂，混合后静置10-20分钟后，以1000×g离心15分钟，收集上清。

5. 体液：包括胸腹水、脑脊液，分泌物等。使用不含热原和内毒素的离心管收集，以1000×g离心15分钟，收集上清。

6. 组织标本：切取组织标本，称取重量0.5mg，加入500ul的PBS，用手工或匀浆器，或超声破碎仪将标本匀浆，以2000-3000rmp离心20分钟，收集上清进行检测。

7. 样品中不能含有NaN3，因NaN3抑制辣根过氧化物酶的（HRP）活性。

8. 保存：如果样品不能立即检测，应将其分装，-70 ℃保存，避免反复冷冻。保存过程中如出现沉淀，应再次离心。血液标本尽可能的不要使用溶血或高血脂血。如果血清中含大量颗粒，检测前先离心或过滤。不要在37℃或更高的温度加热解冻。应在室温下解冻并确保样品均匀地充分解冻。

酶联免疫检测试剂盒DRGT操作步骤：

1. 取出试剂盒，室温（20-25℃）放置30分钟。

2. 分组：取出96孔板，根据待测样品数量加上标准品的数量决定所需的板条数，把剩余的板条继续冷藏处理。分别设标准品组（6个浓度）、空白孔、待测样品组。

注：为减少实验误差，保证准确性，建议设置复孔。

3. 加样：依照标准品的顺序分别加入50ul的标准品溶液于空白微孔中；空白对照孔加入50ul的蒸馏水；其余微孔中加入 50ul的待测样本。

4. 加酶标溶液：标准品组、待测样本组各孔中加入100ul 的酶标溶液（空白对照孔除外）。

5. 温育：酶标板用封板纸密封后，放入湿盒内于37℃恒温孵育1小时。

6. 洗板：用稀释后的洗涤液注满每孔，静置15-30s，充分清洗酶标板5次，用吸水纸拍干。

7. 显色：各孔加入显色剂A液50ul后，再加入显色剂B液50ul。

8. 终止：25-37℃下避光反应10-15分钟，加入50ul终止液。

9. 读板：在450nm波长读取各孔的OD值。

注：读板时必须拭干板底残留的液体和手指痕迹，读板时间控制在终止反应后的30分钟内，以免影响准确性。